La electroforesis en gel es una técnica utilizada para separar mezclas como el ADN y las proteínas. La separación se basa en la carga positiva o negativa de una molécula y en su tamaño. La electroforesis en gel utiliza un gel (como la gelatina) y se aplica un campo eléctrico a través del gel.

La palabra electroforesis viene de -electro, porque se utiliza un campo eléctrico, y -foresis, que significa movimiento.

 

¿Cómo funciona?

Cuando se aplica un campo eléctrico al gel, las moléculas cargadas se desplazan hacia el polo de carga opuesta: las moléculas con carga negativa migran hacia el ánodo positivo y las de carga positiva hacia el cátodo negativo. La velocidad de migración depende principalmente de:

  • Tamaño y forma: moléculas más pequeñas atraviesan los poros del gel con más facilidad y se mueven más rápido.
  • Carga neta: mayor carga produce mayor fuerza de arrastre en el campo eléctrico.
  • Porosidad del gel: determinada por la concentración y el tipo de gel (por ejemplo, agarosa o poliacrilamida).
  • Condiciones de la corrida: voltaje aplicado, composición del buffer y temperatura.

Tipos de geles y cuándo usarlos

  • Agarosa: ideal para separación de fragmentos de ADN y de ARN; se usa normalmente entre 0,5 % y 2 % según el tamaño de las moléculas que se quieran resolver (por ejemplo, 0,8 % para fragmentos grandes, 2 % para fragmentos pequeños).
  • Poliacrilamida (PAGE): ofrece mayor resolución y se usa para separar proteínas o fragmentos de ADN pequeños; en proteínas suele emplearse en formato SDS‑PAGE con concentraciones típicas entre 5 % y 20 %.

Materiales y reactivos comunes

  • Buffers: TAE o TBE para ADN; buffers específicos tipo Laemmli para SDS‑PAGE de proteínas.
  • Tintes y reveladores: bromuro de etidio (EtBr, mutagénico), SYBR Safe, GelRed para ADN; Coomassie brillante o tinción plata para proteínas.
  • Marcadores de peso molecular (ladders) para estimar el tamaño de las bandas.
  • Colorantes de carga (loading dye) para visualizar la migración y ayudar a hundir las muestras en los pocillos.

Pasos básicos de un experimento con gel de agarosa (ADN)

  • Preparar el gel mezclando agarosa y buffer, calentar hasta disolver y verter en un molde con un peine para formar los pocillos.
  • Dejar solidificar, retirar el peine y colocar el gel en la cubeta con buffer de corrida.
  • Mezclar las muestras de ADN con el colorante de carga y pipetear en los pocillos; incluir un marcador de peso molecular.
  • Conectar la fuente de alimentación y aplicar el voltaje apropiado (normalmente entre 5–10 V/cm del gel).
  • Una vez finalizada la corrida, teñir el gel (si procede) y visualizar en un transiluminador UV o con luz azul si se usan tintes seguros.

Aplicaciones principales

  • Control y cuantificación de productos de PCR y fragmentos de restricción.
  • Determinación del tamaño de fragmentos de ADN y verificación de integridad genética.
  • Separación y análisis de proteínas (SDS‑PAGE) y preparación para western blot.
  • Purificación de fragmentos de ADN para clonación o secuenciación.
  • Estudios de expresión proteica, análisis de isoformas y modificaciones postraduccionales.
  • Aplicaciones forenses, de diagnóstico y de investigación básica y aplicada.

Consejos prácticos y resolución de problemas

  • Bandas difusas o en smeared: posible degradación del ADN/proteína, exceso de carga, sales en la muestra o gel con porcentaje inadecuado.
  • Bandas débiles: baja concentración de muestra, tinción insuficiente o mal contacto con el buffer.
  • Bandas “sonrientes” (smiling): calentamiento desigual por voltaje demasiado alto; bajar el voltaje o ventilar la cubeta.
  • Las bandas no migran correctamente: comprobar la polaridad de los electrodos (es fácil invertirlos) y la composición del buffer.

Seguridad y manejo

  • El bromuro de etidio es un agente intercalante mutagénico; manipular con guantes, gafas y eliminar según normativa. Considerar alternativas menos tóxicas como SYBR Safe o GelRed.
  • La acrilamida monomérica es neurotóxica antes de polimerizarse; usar protección y evitar la inhalación y el contacto directo.
  • Al visualizar gels con luz UV, proteger ojos y piel con gafas y pantalla de protección.

Alternativas y técnicas complementarias

  • Electroforesis capilar: mayor resolución y automatización, utilizada en secuenciación y análisis de fragmentos.
  • HPLC y espectrometría de masas: para análisis proteómico detallado y cuantitativo.

En resumen, la electroforesis en gel es una técnica versátil y fundamental en laboratorios de biología molecular y bioquímica. Su eficacia depende de elegir el tipo de gel y condiciones adecuadas, usar controles y marcadores apropiados, y aplicar buenas prácticas de seguridad.